使用方法：

 1. 贴壁细胞的消化：

 a. 吸去培养液，用无菌的 PBS、Hanks 液或无血清培养液洗涤细胞一次，以去除残余的血清。

 b. 加入少量胰酶消化液，略盖过细胞即可，室温放置 30 秒至 2 分钟。不同的细胞消化时间有所不同。

 c. 显微镜下观察，细胞明显收缩，并且肉眼观察培养器皿底部发现细胞的形态发生明显的变化；或者用枪吹打细胞发现细 胞刚好可以被吹打下来。此时吸除胰酶消化液。加入含血清的完全细胞培养液，吹打下细胞，即可直接用于后续实 验。

 d. 如果发现消化不足，则加入胰酶细胞消化液重新消化。 如果发现细胞消化时间过长，未及吹打细胞，细胞已经有部分直接从培养器皿底部脱落，直接用胰酶细胞培养液把细胞全部吹打下来。1000-2000g 离心 1 分钟，沉淀细胞，尽量去除胰酶细胞消化液后，加入含血清的完全培养液重新悬浮细胞， 即可用于后续实验。

 2. 组织的消化：

 a. 不同的组织需要消化的时间相差很大，通常以消化后可以充分打散组织为宜。

注意事项：

 1.在使用胰酶细胞消化液的过程中要特别注意避免消化液被细菌污染。

 2.胰酶细胞消化液消化细胞时间不宜过长，否则细胞铺板后生长状况会较差。

 3.本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

 4.为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

附录：不同胰酶细胞消化液的比较和选择

 1. 如果希望消化能力比较强，推荐使用含有 EDTA 的胰酶消化液，消化能力相对更强一些。 

 2. 如果希望观察比较方便，推荐选择含酚红的胰酶消化液。

 3. 对于酚红可能会干扰后续的测试分析，推荐选择不含酚红的胰酶消化液。

 4. 对于 EDTA 可能会干扰后续的测试分析时，推荐不含 EDTA 的胰酶消化液。